（4）移栽；
出瓶前，先將試管苗放在散射自然光下練苗7d左右，煉苗時可打開瓶蓋，每天早、中、晚各噴水1次，以保持濕度。移栽時取出試管苗，洗去根部培養基，可用0.05%高錳酸鉀蘸根消毒後，移栽在經滅菌的珍珠岩和泥炭以1∶1混合的基質中，用塑料薄膜覆蓋以保持濕度，7d後打開薄膜，逐漸降低濕度，成活率為96%。澆灌用水為經軟化處理的自來水。
8.2.4非洲菊快繁；
非洲菊別名扶郎花，為菊科多年生宿根草本植物。非洲菊原產南非，因其稈直花大，色彩豔麗明亮又具有淡而柔和的色係變化，通常四季有花，切花率高，水插存活時間長，栽培省工省時，深受人們的喜愛，已成為世界著名十大切花之一。
1）外植體材料；
取花梗長為1～3cm的花蕾，切取花托部位作外植體，或采用直徑為0.5～1cm扶郎花的幼小花蕾作外植體。
2）培養方法；
將花梗在0.1%氯化汞溶液中消毒12min後取出，用無菌水衝洗3～4次。切下花托部位並分切為3～5mm小塊，放於誘導培養基（MS+6BA2mg/L+NAA0.2mg/L+IAA0.2mg/L）上培養。置於光照1000lx，溫度（25±3）℃下培養，約10d後切口處形成愈傷組織。
待誘導出的不定芽長至3～4片葉、葉長3～4cm大小時切下，置於增殖培養基（MS+KT5mg/L+IAA0.2mg/L）上，於光照1500～2000lx、溫度（25±3）℃下進行增殖培養，周期為20～25d。
將叢芽切成單株芽苗，放於生根培養1/2MS+NAA0.1mg/L上進行誘導生根，溫度、光照條件與增殖階段相同。經過1個月生根培養，將生根苗出瓶移栽到苗床並統計生根率。
非洲菊試管苗大部分品種均易誘導生根。經25～30d的生根培養，生根率均可達到90%以上，且平均每苗生根都在2.5條以上。
當扶郎花無菌瓶苗有3～5條根，且根長達2cm以上時，可在常溫條件下，放入培養溫室中進行煉苗3d，然後打開培養瓶蓋再煉苗2d，即可出瓶。出瓶時，洗淨扶郎花根部培養基，並將其移栽於珍珠岩∶蛭石=1∶1的基質中，保持80%～90%的空氣濕度，適當遮陰。約2周後即可成活，成活率在95%以上。培養40～50d即可上盆。盆栽扶郎花適宜疏鬆肥沃的酸性沙質壤土，泥炭、礱糠灰、園土也是其盆栽理想基質。盆栽時注意淺植，以利生長，否則易腐爛。
3）注意措施；
（1）保溫保濕；
試管苗在瓶裏的濕度是100%，移栽後空氣中的濕度減小，須用薄膜保濕1周左右，保持溫度在22℃左右。
（2）控製光照；
由於室外的光照強度較大，要用一層透光率為50%的遮陽網蓋在棚膜上，遮陽1周左右，減少陽光對小苗的灼傷。
（3）注意防黴；
有的試管苗根部的培養基清洗不徹底容易引起黴菌滋生，應每3～4d噴施一次75%的甲基托布津可濕性粉劑800倍液，或用75%的百菌清可濕性粉劑800倍液加以防治。
（4）及時施肥；
試管苗移栽後應及時施肥，營養液先稀後濃，試管苗馴化成活後移栽到營養缽裏假植時，應提前施一次濃營養液，使試管苗帶肥移栽，以利移栽後生長良好。
8.2.5月季快繁；
月季為落葉灌木或常綠灌木，或蔓狀與攀援狀藤本植物。莖為棕色偏綠，具有鉤刺或無刺，也有幾乎沒有刺的月季。小枝綠色，葉為墨綠色，對生、單生，多數羽狀複葉，小葉一般3～5片，寬卵形（橢圓）或卵狀長圓形，長2.5～6cm，先端漸尖，具尖齒，葉緣有鋸齒，兩麵無毛，光滑；托葉與葉柄合生，全緣或具腺齒，頂端分離為耳狀。花生於枝頂，花朵常簇生，稀單生，花色甚多，色澤各異，徑4～5cm，多為重瓣也有單瓣者；大多數是完全花，或者是兩性花。有花中皇後的美稱。花有微香，花期4—10月（北方）、3—11月（南方），春季開花最多，肉質薔薇果，成熟後呈紅黃色，頂部裂開，種子為瘦果，栗褐色。
1）外植體的選擇、消毒及接種；
外植體一般選取生長健壯的、當年生枝條的、飽滿而未萌發的側芽。取回枝條用自來水衝洗幹淨，無菌條件下用70%酒精表麵消毒30～40s，再用0.1%HgCl2溶液滅菌5～10min，最後用無菌水衝洗3～5次。芽的快速繁殖與供試材料的基因型有關，還與外植體的取材部位有關，來源於枝條中部的側芽的繁殖速率最快。相同條件下，一年生枝條的冬芽和當年生枝條的腋芽作為外植體，越冬芽的成活率較高，且從接種到萌動時間較短，生長快，在後代繁殖中植株健壯。
誘導培養基以MS為基本培養基，附加適量的6BA和萘乙酸NAA。最適的側芽誘導培養基為MS+6BA0.5～3mg/L+NAA0.01～1mg/L，且培養基中添加蔗糖有增加叢生芽數量的作用。
2）繼代培養；
將誘導培養基上已經萌發的嫩芽轉入附加6BA、NAA等激素的MS培養基中，進行增殖繼代。KT、IAA等激素作用效果較差，協同作用不明顯。低濃度的6BA有利於不定芽的增殖，濃度過高則抑製不定芽增殖，適量NAA有利於芽和葉生長，但濃度過高誘導產生大量愈傷組織，不利於側芽的直接分化和生長。
在NAA濃度相同而BA濃度不同的培養基中，隨BA濃度的升高，芽苗的增殖係數也相應提高。在BA濃度相同而NAA濃度不同的培養基中，隨NAA濃度升高，小芽生長速度加快，繼代所需時間對增殖係數也有一定的影響。此外，增殖係數還與品種有關。從增殖倍數、葉片數、再生芽長勢等綜合因子來看，MS+BA0.5～2mg/L+NAA0.01～0.05mg/L是最適的不定芽增殖培養。
3）生根培養；
試管苗在繼代培養基中隻誘導地上部分生長。待培養一段時間後，轉入生根培養基中，誘導生根。多數試驗采用的培養基為1/2MS（大量元素減半）。采用1/4MS培養基，不加生長素即可促進生根。在無菌苗的生根誘導過程中，生長素的種類和濃度起決定性作用。低濃度的生長素有利於根的形成，適當濃度的IBA、NAA對生根率有顯著影響，濃度過高會抑製根的形成，NAA濃度為0.5mg/L時效果最佳。
生根階段加入活性炭（AC）後，有助於提高生根率和生根質量。利用1/2MS+IBA0.2mg/L+AC3g/L，誘導生根，生根率最高為90%，且隨著活性炭百分比的加大，生根率逐漸下降。
4）馴化與移栽；
小苗接到生根培養基上後，14d可見基部分化出根點，20d則長出許多白根，即可進入試管苗移栽階段。所有試管苗移栽前，都應先將生根苗移至室溫進行移栽前的鍛煉。鍛煉時間與移栽成活率有關，煉苗7d以上，成活率達到95%。影響移栽成活率的主要因素有3個，即濕度、溫度以及基質種類及其帶菌量。因此，移栽時應保持90%以上濕度，18～25℃的環境溫度，基質用0.2%的高錳酸鉀或其他滅菌劑進行消毒滅菌。而基質的選擇上，以蛭石和珍珠岩的栽培效果較好。移栽成活後噴極稀的營養液，使小苗得到營養補充。10～15d即長出新葉，且根係快速生長，可適時進行大田移栽。
8.2.6康乃馨快繁；
康乃馨即香石竹，為石竹科石竹屬植物，分布於歐洲溫帶以及中國大陸的福建、湖北等地，原產地中海地區，是目前世界上應用最普遍的花卉之一。
多年生宿根或常綠亞灌木，株高30～100cm或更高。莖直立多分枝，基部半木質化，莖節部膨大，著生交互對生葉片，葉線狀披針形，基部抱莖，具白粉而呈灰綠色，有較明顯的葉脈3～5條。花期4—9月，保護地栽培四季開花。喜陰涼、幹燥、陽光充足與通風良好的生態環境。耐寒性好，耐熱性較差，最適生長溫度14～21℃，溫度超過27℃或低於14℃時，植株生長緩慢。宜栽植於富含腐殖質，排水良好的石灰質土壤，喜肥。
1）莖尖分生組織培養脫毒；
（1）外植體滅菌；
從田間或溫室中長勢健壯無病的植株上，選擇較為粗壯而處在營養生長階段帶有2～3對成熟葉片的嫩芽，剝取成熟葉片，留下嫩芽在清水中清洗後，用70%的酒精消毒1min，再用2%的次氯酸鈉消毒15min，或用0.1%升汞消毒8min，最後用無菌水漂洗3～4次，經無菌濾紙吸幹水分後，放在無菌的培養皿中備用。
（2）莖尖剝離；
在超淨工作台上剝開莖端，切下莖尖，立即接入預先配置好的培養基上，一般每隻小三角瓶接入1個莖尖。作為快速繁殖，切取0.5cm大小的莖尖進行培養。作為脫毒培養，則要在雙筒解剖鏡下切取0.3～0.4mm的莖尖進行培養。
（3）莖尖培養與脫毒；
切下的莖尖應迅速接種到培養基上，以防止莖尖失水幹燥。與許多種植物去除病毒的實際結果相一致，切取香石竹的莖尖大小也與病毒除去效果密切相關。據Hollings等（1964）在去除康乃馨病毒的報告中指出，即使切取0.1mm大小的莖尖，仍有1/3的莖尖植株不能完全去毒，去毒莖尖能達到66%，若切取1mm或更長的莖尖，則完全不能去毒。過小的莖尖成活率極低，通常認為切取莖尖的長度在0.25～0.5mm較好，待獲得莖尖植株後，通過病毒學鑒定，再擴大繁殖去毒株係。
在切去莖尖進行離體培養前，應進行熱處理，提高脫毒效果。熱處理去毒結合莖尖培養，QuAk（1961）采用38～40℃高溫處理6～8周，再分離1mm長的莖尖，去除了康乃馨條斑病毒、花葉病毒、環斑病毒等。另據Brierley（1962）報道，香石竹在38℃下培養1個月，能去掉康乃馨斑駁病毒，2個月即可去除所有各種病毒。然而，另有報道指出，在36～42℃下處理70d能去除康乃馨斑駁病毒，但不能去除條斑病毒。在38℃下處理140d，也未能去除康乃馨蝕環病毒。
香石竹性喜光，好溫涼，組織培養時以20～25℃為宜，光照以800～2000lx為宜，光照時間通常以16h/d為好。也有人主張用24h連續不斷的光照，這隻在必要時采用，因為自然界並非如此。